曲久辉院士团队WR:实验室人工湿地微生物介导的同步脱氮和磺胺甲恶唑/N-乙酰磺胺甲恶唑去除研究
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Environmentor2017
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人工湿地(CWs)越来越多地用于处理复杂的污染物,如氮和来自人为来源的新兴有机微污染物。反硝化,厌氧氨氧化,异化硝酸盐还原为铵,和氧化亚氮的释放中经常检测到的磺胺类药物磺胺甲恶唑(SMX)及N-乙酰磺胺甲恶唑(N-SMX)。在实验室规模的CW进行了调查190天,在第5周SMX和N-SMX组的反硝化速率受到显著抑制。随后又恢复,且相关的氮减少和抗生素抗性基因(ARGs)的增加。最后,在操作期间,在加入SMX和N-SMX的实验室规模CW中,氮减少(> 90%)和抗生素去除(> 80%)也恢复,这揭示了SMX或N-SMX去除和氮减少的相互作用。
共四对垂直地流下CW,每对CW一式两份。第一对CWs没有用抗生素处理,第二对加入100 μg·L-1 SMX,第三对加入100 μg·L-1 N-SMX,第四对加入100 μg·L-1 SMX和100 μg·L-1 N-SMX,所有8个CW种植芦苇。进行以下分析:
(1)理化分析;反硝化、厌氧氨氧化和DNRA速率的测量;、COD、抗生素、氮去除率计算(2)N2O释放速率的测量;(3)定量聚合酶链反应(qPCR)和测序分析。
结果
1. SMX和N-SMX加入均引起氮还原的短期抑制(0~34d)
(1) 反硝化速率:在190天的时间里,首先下降,然后增加。第5周(34 d),空白组的反硝化率首先恢复到正常水平,其他3组抗生素组的反硝化率均很低。加入SMX和N-SMX在第34天显著抑制反硝化作用(图1a)。
(2) 厌氧氨氧:当抗生素暴露组的反硝化速率在第34天被显著抑制时,抗生素暴露组的厌氧氨氧化速率增加(图1b)。此外,由于反硝化速率恢复到较高水平(11.18 nmol N·g-1·h-1),空白组的厌氧氨氧化速率降至无法检测的水平。
(3) DNRA速率的变化:其首先降低然后增加,与反硝化速率的变化相似,在第34天,抗生素暴露组中的DNRA率低于空白组中的DNRA率(图1c)。
(4) N2O释放速率响应:反硝化进行得越彻底,N2O释放越受到抑制。第5周时,由于反硝化作用较初期增强,空白组及三个处理组N2O释放速率均下降,然而,与空白组相比,处理组的N2O释放率速率受到抑制更高(图1d)。
2. 氮减少随着SMX或NSMX长期暴露逐渐恢复(35~190d)
在第9周(65 d),SMX和N-SMX组的反硝化速率恢复到与空白组相当的水平。直到第190天,此时,在所有四个组中均未检测到厌氧氨氧化速率,且四个组显示出15−20 nmol N·g−1·h−1的高反硝化速率(图2a、b)。SMX或N-SMX组未观察到显著的规律性。结果表明,抗生素首先在短期内抑制反硝化速率,然后反硝化速率恢复到与非抗生素暴露组相同的正常水平,并在氮还原中发挥重要作用。
抗生素组中的DNRA率也恢复到与空白组中的那些相似的水平(图2c)。然而,在第150天,各组中的DNRA率降低,这可能是由于温度降低。5周后,N2O释放速率持续下降,并且由于显著的反硝化活性而显示出相当负值,表明N2O排放被完全反硝化抑制。因此,在空白组以及SMX和N-SMX组中,三种氮还原过程中的主要途径是反硝化,其在5周后贡献了84.50%-98.17%的硝酸盐还原。
SMX、N-SMX和SMX混合N-SMX组中narG、nirS和nosZ的丰度在第65天恢复到与空白组中的基因丰度相似,并在第100天达到峰值。然而,在第190天,四个组中narG、nirS和nosZ的丰度在第0天恢复到其初始水平(图2e、f、g、h)。
3. 水和基质中的氮和SMX或N-SMX去除
总体而言,虽然各组均能稳定降低COD,但NH4+-N去除率波动较大。与空白组NH4+-N的稳定去除相比,SMX、N-SMX和SMX混合NSMX组NH4+-N的去除率反复下降和恢复。在第34天(5周),三个抗生素组的NH4+-N去除率均显著降低,这与氮还原的抑制作用相对应(图3)。
SMX和N-SMX的去除率都有所下降,随后恢复。100d后SMX去除率逐渐恢复到80%以上。测量每个基质样品中NH4+-N、NO2−-N和NO3−-N的浓度,以验证中试CW中是否存在氮。NH4+-N浓度始终较低,说明硝化作用较彻底,与连续去除水中NH4+-N的结果一致。NO3−-N浓度呈现先升高后降低的趋势,实验结束时基质中NO3−-N降至较低水平,这表明硝化和反硝化同时发生。第5周NO2−-N的浓度高于之后的浓度,因为此时反硝化作用受到抑制。随后,NO2−-N被消耗,浓度在第27周降至较低水平。
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