乙烯信号转导通路研究 乙烯信号转导通路研究

乙烯信号转导通路研究

  • 期刊名字:自然杂志
  • 文件大小:535kb
  • 论文作者:张存立,郭红卫
  • 作者单位:北京大学生命科学学院蛋白质与植物基因研究国家重点实验室
  • 更新时间:2020-09-28
  • 下载次数:
论文简介

自然杂志第34卷第4期科技进展doi: 103969/j. issn. 0253-9608.2012.04.006乙烯信号转导通路研究张存立中郭红卫②①博士研究生,②教授,北京大学生命科学学院蛋白质与植物基因研究国家重点实验室,北京100871关键词植物激素 乙烯信号转导作为5大类植物激素之-的乙烯-直是科学家关注和研究的焦点。虽然结构简单,但是气态漱素乙烯在植物的生长发育以及胁迫反应中具有要的作用。通过近20年的研究,科学家已经描绘出-条近似线性的乙烯信号转导通路。在模式植物拟南芥中,这条通路的最上游是由一个多基因家族编码的乙烯的5个受体ETR1, ETR2, ERS1,ERS2和EIN4.与之相结合并共同定位于内质网上的是-一个类似Raf的蛋白激酶CTR1。在没有乙烯存在的条件下,受体和CTR1的结合能够协同抑制下游乙烯信号。在这两类负调控因子的下游是乙烯信号的正调控因子EIN2。.如果EIN2基因突变,即使有高浓度乙烯存在,植物黄化苗也将表现出完全的乙烯不敏感表型,显示出EIN2在乙烯信号通路中的核心地位。在EIN2的下游是乙烯信号的转录因子家族EIN3以及EILs,它们在响应乙烯信号之后会起始乙烯相关基因的表达。研究还发现,乙烯的转录因子受泛素化降解途径调控,负责识别及结合EIN3等转录因子的F-box蛋自是EBF1和EBF2。EIN5 是一种5'→3'外切核酸酶,它能够通过促进EBF1和EBF2的mRNA的降解来拮抗这两个F-box蛋白对EIN3的负反馈调控。最近,有研究表明EIN2同样是一个半衰期很短并经由泛素化降解途径调控的蛋自,而执行调控EIN2任务的是另外两个F-box蛋白ETP1和ETP2。虽然人们对于乙烯信号转导通路的认识取得了巨大进步,但是该信号通路的精细调节机制以及乙烯信号与其他植物激素信号之间的交叉反应还需进行更为深入的研究。虽然乙烯是一种结构非常简单的气体植物激素,但乙烯受体相结合并协同抑制下游乙烯信号的是一个属是它对植物发育以及适应性反应起着非常重要的作用。于Raf蛋白激酶家族的负调节因子CTR1蛋白[7.8]。遗种子萌发、开花、叶片衰老、果实成熟、叶片剪切、根瘤、传上位于CTR1下游的正调控因子EIN2是一个定位于细胞程序性死亡以及对非生物胁迫和病原体人侵的反内质网膜.上的大的跨膜蛋白。EIN2 的N端与哺乳动物应等生理过程都与乙烯密切相关[13]。鉴定乙烯反应的金属离子通道蛋白NRAMP家族有一定的相似性;而其特征性实验是观察生长在暗处并经乙烯处理之后植物C末端是一个亲水的功能未知的组分。研究发现,EIN2黄化苗的“三重反应”。所谓“三重反应”是指黄化苗受的C末端与已知蛋白没有任何同源性,但是如果在拟南乙烯处理后下胚轴和根的伸长被抑制、下胚轴变粗以及顶端弯钩加剧(图1)。科学家通过基于“三重反应”进行遗传筛选的方法,在过去的近20年中找到一系列拟南芥的乙烯突变体(图2)。这些突变体可以被分为3种类型:①乙烯过表达突变体,如eto1, eto2, eto3;②组成型乙烯反应突变体,如ctr1;③乙烯不敏感突变体,如etr1, etr2,ein2, ein3, ein4, ein5以及ein61-2.4]。通过对这些拟南芥突变体的深入研究,科学家逐渐描绘出一条近似线性的乙烯信号转导通路(图3)。首先,在上游对乙烯分子的感知是通过一个与内质网膜相结合的受体家族来完成的,其中包括ETR1, ETR2, ERS1,中国煤化工ERS2 ,EIN4。这些乙烯受体在序列上具有相似性,并且在结构.上都与细菌双组分组蛋白激酶相类似[3.5.6]。与CHCNMHG长仕CT(入)的“三重反应"表型,219●ProgressChinese Journal of Nature Vol, 34 No. 4黄花苗成株作为一个正调控因子,其抑制被解除后即可通过正调乙烯信号途径的主要转录因子EIN3和EIL1而将信号通过转录级联方式传递下去,使得下游乙烯应答基因的转录被活化而产生乙烯反应10-11]。近年来,一些新的科研成果进- -步丰富和扩展了乙烯的线性信号转导通路。研究表明,铜离子作为一个辅助因子促进乙烯与受体的结合,而铜离子的转运和浓度梯度的维持对于乙烯与受体的结合是一个必要的过程。-种具有铜离子转运功能的P-type ATPase RAN1在乙烯受体的生物发生以及铜离子的稳态平衡过程中起到重要的调节作用[12]。RTE1是另-类对受体功能起调节作用的乙烯信号的负调控蛋白,它与乙烯受体共定位于内质网膜上并在遗传上位于ETR1的上游,主要通过调节ETR1的活性来调节乙烯反应13.14]。研究表明,EIN3蛋白可被两个F-box蛋白EBF1和EBF2识别结合并进人泛素化降解过程[5-17]。有趣的是,研究表明EIN2同样是-一个半衰期很短的会被泛素化降解的蛋白,识别和降解EIN2蛋白圈2野生型.乙烯不敏感突变体及组成型乙烯的F-box蛋白是ETP1和ETP2[18]。5'→3'外切核酸酶反应突变体黄化苗和成株表型EIN5/XRN4蛋白能够通过降解EBF1和EBF2的mR-芥中单独转基因表达该区段却足以组成型地激活乙烯NA来拮抗EBF1 和EBF2对EIN3的负反馈调和胁迫反应[9]。表型、遗传以及生化的分析结果都显示控[9.20。近期,关于EIN3蛋白磷酸化修饰调节的研究EIN2蛋白位于乙烯信号通路的一个中心位置。EIN2揭示出更为复杂的激素调控网络的存在[21-22]。Golg/EREthylene民MPS/ERS2EIN4Cytoplasm|CTRIRNudeus, Ethylene ResponseEFLEBFZ,HUSL,PORA中国煤化工图3乙烯信号转导通路示意TYHCNM HG●220●自然杂志第34卷第4期科技进展的参与,而在此过程中负责铜离了转运和浓度梯度维持1乙烯受体及其对乙烯信号的感知的蛋白是一个具有P-type ATPase 活性的RAN1蛋白[12。RTE1是另一类进化上非常保守的膜结合蛋白,植物细胞通过定位于内质网上的受体感知乙烯信其转录活性受乙烯调控,并且RTE1通过与乙烯受体相号。在拟南芥中共有由一个多基因家族编码的5个乙互作用而负调控乙烯反应,暗示乙烯信号的感知可能存烯受体,分别是ETR1, ETR2, ERS1, ERS2和EIN4.在更为精细的调节过程[13.35]。它们在结构上类似于细菌和真菌中存在的双组分组蛋白激酶5-6.23]。通过比较其结构特征,发现乙烯受体存在至少3类保守的结构域:N端是一一个在铜离子协助下2 CTR1激酶及其可能介导的MAPK途径与乙烯结合的跨膜结构域;中间是一个负责不同受体间与乙烯受体结合并协同抑制下游乙烯反应的是另相互作用的GAF结构域;C端是一个能与下游组分一个负调节因子CTR1蛋白。ctr1突变体会表现出组CTR1相互作用的激酶结构域。乙烯5个受体可根据其成型的乙烯反应表型[7]。序列分析显示CTR1蛋白是结构相似性被分为两大类,一类受体包括ETR1和类似于哺乳动物Raf家族的丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶。ERS1 ,另一类受体包括ETR2, ERS2和EIN4[6.24J。研CTR1通过其氨基端与内质网上的乙烯受体的羧基端相究表明,乙烯受体的N端涉及受体的膜定位、乙烯结合结合而被间接锚定在内质网膜上,从而形成受体.以及受体的二聚化等基本功能,因此5个乙烯受体在N端具有较高的相似性(25-26]。乙烯受体的C端则是类似CTR1复合体,而且CTR1对下游乙烯信号的负调控功于组蛋白激酶的结构域。但是,体外激酶活性实验表明能是依赖于这一-蛋白相互作用的[8,36-37]。研究表明,仅有ETR1, ERS1具有组蛋白激酶活性;其他受体CTR1的羧基端具有丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶活性,而激ETR2,ERS2和EIN4则由于缺少组蛋白激酶活性所必酶失活的ctr1突变体将会表现出组成型乙烯反应表需的氨基酸残基而可能作为丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶来型[37]。起作用[27-28]。CTR1的功能依赖于其与乙烯受体的结合。研究发由于乙烯结合能力发生突变而产生的受体功能获现,由于氨基端发生错义突变而破坏了与受体结合能力得型突变体将会导致组成型乙烯不敏感表型的出现,表的CTR1即便其羧基端激酶活性不受影响,仍然不能再明乙烯受体作为乙烯信号的负调控因子而存对下游乙烯信号产生抑制作用[37]。基于CTR1在序列在(5.23.29-30]。同时,乙烯的5个受体存在功能上的冗上与Raf蛋白激酶的相似性,人们很容易联想到CTR1余,因为单个受体的功能缺失型突变体表型与野生型类在乙烯信号通路中是否作为一种MAPKKK通过介导似,但多重功能缺失突变体则具有组成型的乙烯反应表-条MAPK级联反应而激活下游乙烯信号。虽然生化型[31]。进一步研究发现,转基因表达类型I受体ETR1证据显示乙烯反应能够影响植物细胞内的磷酸化水平,或ERS1能够回复功能缺失型双突变体etr1/ers1的组但是之前的研究没有直接证据证明乙烯信号通路存在成型乙烯反应表型;转基因表达类型II受体ETR2,一条由CTR1介导的激活下游乙烯信号通路的MAPKERS2或EIN4却不能回复etr1/ers1 双突变体的组成途径[38-40]。有趣的是,多种证据却表明细胞内存在-型乙烯反应表型(32]。科学家猜测是否因为类型I受体条MKK4/5/9-MPK3/6途径通过修饰乙烯生物合成限独特的组氨酸激酶活性导致了其对功能缺失型双突变速酶ACS2/6的稳定性而在乙烯生物合成水平而非乙体表型的回复作用。但是,转基因表达组氨酸激酶失活烯信号转导水平对乙烯反应进行调节[41441。近期,有的ETR1仍然可以回复功能缺失型双突变体etr1/ers1研究小组认为在拟南芥原生质体中CTR1可以绕过下的表型,说明组氨酸激酶活性并不是类型I受体抑制乙烯信号所必需的,而可能只是参与了乙烯信号的某些调游正调控因子EIN2蛋白而直接通过MKK9-MPK3/6节过程256.33.还有研究表明,即便受体缺失整个羧基控制乙烯信号的转录因子EIN3蛋白的磷酸化而使其失端包括组氨酸激酶区和信号接受区,功能获得型的受体活,从而抑制下游乙烯信号[21]。但是,另一组科学家在ETR1仍然具有抑制下游乙烯信号的功能,说明受体用对应的MKK9基因突变体以及转基因过表达植株进ETR1的C端对于其抑制功能并非必需[2]。科学家因行实验时却表明,在拟南芥体内MKK9并非绕过EIN2此推测乙烯受体之间可以通过相互协同作用而维持受蛋白而直中国煤化工作用于乙烯生物合体的抑制功能[25.27.34]。乙烯与受体的结合需要铜离子成途径而YHCNMHG221●ProgressChinese Journal of Nature Vol, 34 No. 4同源性:最高,功能上也最为相似[10.22]。研究发现,EIN33 EIN2跨膜蛋白及其谜一.样的功能与EIL1双基因突变形成的突变体ein3/eil1 与ein2-样在黄化苗时期和成年植株中能够表现出完全的乙烯EIN2蛋白位于CTR1的下游,是乙烯信号通路中不敏感表型,说明这两个转录因子负责大部分的乙烯信的第一个正调控组分。科学家在20多年前筛选乙烯突号传递1[10.30]。同时,单独转基因过量表达EIN3或者变体时筛到了它[45]。EIN2基因发生功能缺失型突变EILI,乙烯信号途径都能被组成型地活化;但是,单基因可以产生完全的乙烯不敏感表型,暗示EIN2 在乙烯信功能缺失突变体ein3-1 或eil1-1都只表现出部分乙烯号转导通路中的核心地位[9]。序列分析表明,EIN2基不敏感的表型,说明EIN3及其家族成员不仅正调乙烯因编码一个12跨膜的大的膜结合蛋白,其N端定位于反应而且在功能上存在冗余[10]。除了EIL1,拟南芥中内质网膜上,C端则游离在胞质中[9.46]。进一步研究发还有另外4个EIN3类似蛋白EIL2-EIL5,可能涉及早现,EIN2蛋白的N端类似于具有转运二价阳离子功能期乙烯反应的调节过程[51]。的NRAMP离子通道家族蛋白;与N端不同是, EIN2转录因子EIN3和EIL1在细胞核内通过启动转录.的C端为一亲水区,而且序列分析表明EIN2的C端与级联反应而激活乙烯应答基因的表1.1.52.555研究其他已知蛋白相比没有明显的序列相似性,暗示出发现,EIN3能够通过二聚化的方式特异性地与一个被EIN2蛋白的C端可能具有非常独特的功能[9]。称为EIN3结合位点(EIN3bindingsite,EBS)的短的回虽然EIN2蛋白的N端类似于NRAMP离子通道,文结构启动子区域相结合并启动ERF1,EDF1-4等初级但是没有实验证据表明EIN2的N端确实具有离子转转录因子的表达;而ERF1可以进一步与启动子区含运能力,EIN2的N端在乙烯信号转导通路中的功能还GCC-box的次级乙烯应答基因结合并起始其转录1[1]。有待研究[9。科学家在研究EIN2的功能时还发现,如.有趣的是,研究发现对转录因子EIN3本身的调节发生果转基因过量表达EIN2蛋白的全长或者其N端,拟南在蛋白水平而非转录水平上[10]。在乙烯信号通路中,由芥暗中或者光下的乙烯反应表型都不能被恢复;但是,26S蛋白酶体所介导的泛素化降解途径调节了EIN3蛋转基因单独过量表达EIN2蛋白的C端却能够恢复拟南白的稳定性,而负责识别和结合转录因子EIN3的有两个芥光下生长的幼苗以及成年植株的乙烯反应表型[9]。Fbox蛋白EBF1和EBF2[16-17]。EBF1 和EBF2通过介因此,EIN2蛋白可能是一个双功能信号组分:N端负责导EIN3等转录因子降解过程而对乙烯信号进行负接受.上游乙烯信号,而且参与乙烯的暗形态反应;C端调[15.17]。 另外,EIN3等乙烯转录因子还受到负反馈调节则负责激活下游乙烯信号[9]。虽然研究发现拟南芥中机制的调控,因为乙烯处理能够同时上调EBF2的转录量EIN2蛋白与乙烯受体.COP9光信号复合体组分EER5从而使乙烯反应不至于过强[15.53]。近期研究还发现- -等蛋白具有一-定相互作用,对EIN2功能的研究提供了个具有5'→3'外切核酸酶活性的蛋白EIN5/XRN4可以-定线索,但是EIN2所介导的乙烯信号传递机制仍是通过促进EBF1/EBF2的mRNA的降解来拮抗EBF对一个谜团[4-48]。近期,科学家发现EIN2蛋白也是一种EIN3的负反馈调控,这一发现大大扩展了人们对于乙烯短周期蛋白,可被两个F-box 蛋白ETP1和ETP2识别信号调控水平多样性和复杂性的认识[1].并经由蛋白酶体依赖的泛素化降解途径而降解[18]。此外,在筛选其他激索如生长素、细胞分裂素和脱落酸等5乙烯信号与其他信号通路的交叉反应信号途径的突变体时也能够筛到对应于EIN2基因的突变体,暗示EIN2可能涉及多个激素信号之间的交叉反尽管人们对于乙烯信号转导通路的认识正在逐步应49-50]。由此可见,EIN2蛋白不仅对于乙烯信号至关清晰,但是对于植物多样化乙烯效应的下游分子网络还重要,而且还参与不同激素信号途径之间的交叉反应。知之甚少,而乙烯与其他信号途径的交叉反应为多样化的乙烯反应提供了最为重要的解释[54]。研究表明,乙4 EIN3/EILs在转录水平对乙烯信号烯信号与生长素(auxin)、细胞分裂素(cytokinin,CK)、赤霉素( gibberellin ,GA)、脱落酸(abscisic acid, ABA).的调控油菜素内脂(brassinosteroid, BR)、 茉莉酸( jasmonic乙烯信号经过传递最终被汇聚到位于EIN2蛋白下acid, JA)、水杨酸(salicylic acid, SA) 等植物激素及植游的转录因子家族EIN3以及5个EILs(EIN3-ike pro-物生长因中国煤化工及营养因子存在着teins)等正调控因子。在5个EILs中,EIL1与EIN3的广 泛的联YHCNMHG协同,在植物的生自然杂志第34卷第4期科技进展长发育以及植物应对生物、非生物胁迫等复杂过程中起1)[66]。HSS1 基因编码-一个生长素应答转录因子ARF2到非常重要的作用。(Auxin Response Factor 2),而ARF2对于在HLS1下游调节差异化细胞伸长以及顶端弯钩形成是必需5.1乙烯与生长素的[66。乙烯处理能够下调ARF2的蛋白水平,而且这人们早已知道乙烯和生长素在根的伸长、下胚轴的-过程是HLS1依赖的。综上所述,生长素应答转录因差异化生长以及根毛形成等多种生物学过程中存在广子ARF2通过抑制差异化的生长素效应而抑制顶端弯泛的交叉反应[55]。研究发现,许多在根上特异的乙烯钩的形成;而乙烯通过激活其上游的HLS1蛋白负调不敏感突变体,其生长素的合成或者转运也存在缺陷,ARF2的功能,从而促进顶端弯钩的形成。暗示乙烯可能通过调节生长素信号来抑制植物根的伸长[56-57]。两个在根上特异的乙烯不敏感突变体wei25.2乙烯与细胞分裂素和wei7 的发现把乙烯信号和生长素信号联系起除了生长素,其他激素也可以诱导乙烯生物合成量来[58-59]。WEI2 和WEI7 分别编码色氨酸生物合成的的提高,例如细胞分裂素[67.68]。生长素处理可以导致关键酶邻氨基苯甲酸合成酶的a和β亚基,而色氨酸是几个ACS蛋白转录量的增加,而细胞分裂素可以增加多个生长素生物合成途径的共同前体[59]。乙烯通过激ACS5蛋白的稳定性67.69-70]。另一组科学家的研究显活WEI2和WEI7基因的表达促进了根中生长素的合示细胞分裂素可以增加一些ACS基因的稳定性[71]。此成和积累,从而抑制了植物根的伸长。更为直接的证据外,细胞分裂素对乙烯的诱导依赖于典型的细胞分裂素来自于另一个根特异的乙烯不敏感突变体wei8 的发双组分应答通路的存在,包括组氨酸激酶、组氨酸磷酸现[60]。WEI8基因负责编码生长素生物合成途径中的色转移蛋白以及应答调节因子等的存在。这些结果说明,氨酸氨基转移酶TAA1。研究发现,乙烯处理能够通过特乙烯生物合 成途径的限速酶ACS可以被多种激素包括异地在根部分生区促进TAA1及其同源基因TAR2的表乙烯、生长素、细胞分裂素等通过不同的信号通路介人达促进生长素lAA(indole-3-acetic acid) 的生物合成,从进行调节,这可能由植物自身组织的特异性及其对不同而抑制了根的伸长。另外,乙烯三重反应的短根表型不环境条件的响应来调节乙烯的生物合成量。仅与乙烯调控的生长素在局部的生物合成相关,还与乙烯调控的生长素从分生区到伸长区的分布相关[61-63]。5.3乙烯与赤霉素如前所述,乙烯可以通过促进生长素的合成来抑制植物赤霉素也是植物生长和发育过程中所必需的一种根的伸长。反过来,生长素也可以通过诱导乙烯合成基植物激素。有一个研究组报道,乙烯和赤霉素的交叉反因ACS4的表达而促进乙烯的生物合成[64]。研究发现,应会影响欧洲山毛榉(FagussylvaticaL.)种子由休眠到在黄化苗中ACS4基因可以特异地被lAA诱导;同时,在萌发的转换[72]。他们发现用GA3或者乙烯利处理山拟南芥生长素抗性突变体axr1-12, axr2-1以及aux1-7毛榉的种子之后其乙烯生物合成酶 FsACO1基因的表中ACS4基因的表达存在缺陷[64]。达大幅上调,但是乙烯利的调节效应可以被GA的生物在顶端弯钩的发育上,生长素和乙烯同样存在交叉合成抑制剂多效唑逆转,说明GA正调控FsACO1基因反应。在筛选拟南芥乙烯信号遗传突变体时,科学家发的表达[2]。GA信号通路的一个关键事件即能够与现一个特异的仅在顶端弯钩对乙烯不敏感的突变体GA受体GID1相互作用的负调控因子DELLA蛋白在.hIs1[45]。 过表达HLS1基因能够产生组成型的下胚轴响应GA之后的降解。DELLA蛋白在维持植物体内弯钩表型。乙烯处理能够激活HLS1基因的转录,而在GA的动态平衡以及在调节GA与其他植物激素信号的ein2突变体中HLS1 基因表达下调[65]。研究表明,交 叉反应过程中也发挥着重要作用[73]。在GA存在的hls1突变体对应的基因HLS1编码的蛋白属于N-乙酰情况下,DELLA蛋白被降解,从而下游GA反应的抑制转移酶家族成员[65]。此外,HLS1蛋白的缺失可以导致被解除。有科学家观察到乙烯处理可以延迟GA介导子叶和下胚轴弯钩区域生长素调节基因出现异常的表的依赖于CTR1的GFP-RGA从根细胞核内的消失,说达663]。以上结果表明,HLS1可能通过抑制子叶和下胚明乙烯处理可以稳定DELLA蛋白[74]。相似地,还有轴弯钩区域生长素诱导的细胞伸长而介导顶端弯钩的报道称乙烯可以通过调节DELLA依赖的花分生组织形成。为进一步研究HLS1基因介导的顶端弯钩形成特异性基因来控制龙期转掘[75].7烯信号的激活可以的分子机制,科学家在hls1突变体的基础上筛选到一个减少具有中国煤化工可以促进DELLA可以抑制该突变表型的突变体hss1( HLS1 suppressor蛋白的积MHCNMHG而可以延缓植物生223.ProgressChinese Journal of Nature Vol. 34 No. 4命周期,并且可以通过抑制花分生组织特异性基因且在顶端弯钩建立油菜素内脂的浓度梯度来促进弯钩LEAFY和SOC1的表达延迟开花[75]。最近有研究表的形成80-81]。在控制下胚轴伸长方面,最近的研究发明,GA也能够通过诱导HLS1的表达而使黄化苗顶端现油菜素内脂可能通过其信号途径中的一个受体样蛋弯钩加剧[76]。没有GA时,DELLA蛋白能够与EIN3白激酶FERONIA来调节乙烯反应的强度,以此调节拟的DNA结合结构域互作从而抑制了EIN3 对HLS1基南芥下胚轴的长度[82]。另外,油菜素内脂处理可以使因的转录;施加GA之后,DELLA对EIN3的转录抑制乙烯生物合成增加[67]。近期研究发现,和细胞分裂素效应被解除,HLS1基因的表达被启动,从而促进了顶端类似,油菜素内脂能够通过促进ACS基因转录以及稳弯钩的形成[76]。定ACS5蛋白来增加乙烯的生物合成[71]。5.4乙烯与脱落酸5.6乙烯与茉莉酸科学家在筛选ABA突变体时发现-个能够使种子乙烯和茉莉酸之间同样存在着复杂的交叉反应,既在萌发过程中对ABA敏感性增强的突变体era3是由相互拮抗,又相互协同。一方面,乙烯可以强烈抑制茉于乙烯信号核心组分EIN2基因突变所致,揭示出ABA莉酸介导的损伤应答基因的转录,茉莉酸反过来也可以信号在此过程中与乙烯信号相互作用并且受到乙烯信抑制乙烯介导的顶端弯钩形成,说明两种激素之间在一号的负调77]。实际上,当时有两个独立的课题组分别定条件下可能相互拮抗83-84]。另一方面,在抵抗真菌筛选可能影响ABA信号通路的突变并且都鉴定到了乙感染时二者又可以协同作用,植物受到真菌感染即可快烯信号的突变体77.7]。此外,实验显示ctr1 和ein2突速产生乙烯和茉莉酸并使下游防御基因的表达升高,例变体分别对abi1突变体起增强和抑制作用;其他乙烯如ERF1, ORA59 以及PDF1.2 等防御基因85-87。科不敏感突变体也表现出增强的ABA反应,进-步说明学家发现,如果单独用乙烯或者茉莉酸处理植物即可分在拟南芥种子中乙烯作为ABA信号的一个负调节因子别诱导防御基因的较高水平的表达;有趣的是,如果两存在778。与种子中的效应相反,同样这些在种子中种激素同时施加则会使下游防御基因的表达量达到最表现出增强的ABA反应的乙烯不敏感突变体在根上却高值,说明在诱导防御基因表达上两者具有协同效表现出对ABA反应的降低77-7]。更为复杂的是,研究应85.88]。此外,无论是用乙烯、菜莉酸单独处理或者两发现虽然外源ABA没有影响到乙烯的生物合成,但是者同时处理乙烯不敏感突变体ein2以及茉莉酸不敏感乙烯合成增加突变体可以产生一个与乙烯不敏感突变突变体coi1都无法再诱导下游防御基因的表达,暗示植体相似的在根上对ABA不敏感的表型。很难想像乙烯物防御反应的激活依赖于乙烯和茉莉酸两种信号通路反应降低和乙烯合成增加都能够在根对ABA的反应上的同时存在88-89。最近,科学家发现茉莉酸信号通路产生相同的效应,但是这也进-.步暗示在拟南芥中的负调控因子JAZ蛋白能够通过募集一个RPD3类型ETR1应答途径可能调控了不依赖于乙烯的信号。除了的组蛋白去乙酰化酶HDA6调节组蛋白的乙酰化进而种子和根,有科学家在气孔开闭研究过程中同样发现乙抑制乙烯信号转录因子EIN3/EIL1依赖的基因转录,烯和脱落酸存在相互作用[79]。他们用乙烯过表达突变从而抑制了茉莉酸信号通路[0]。研究发现,与施加乙体eto1-1以及乙烯不敏感突变体etr1-1, ein3-1 研究烯可以使EIN3/EIL1蛋白稳定一样,施加茉莉酸也可发现,乙烯能够抑制ABA诱导的气孔关闭[79]。这一结以通过促进JAZ蛋白的降解而稳定转录因子EIN3/果进一步说明乙烯和脱落酸存在着广泛而复杂的交叉EIL190]。另-方面,如果乙烯信号被阻断,转录因子反应,而且其相互作用在不同组织及发育阶段具有不同EIN3/EIL1将会被迅速降解而导致植物对乙烯和茉莉的效应。酸均不敏感;而当茉莉酸信号被阻断时,将导致JAZ蛋白的大量积累进而强烈抑制转录因子EIN3/EIL1的功5.5乙烯与油菜素内脂能,同样会致使植物对乙烯和茉莉酸不敏感表型的出油菜素内脂近年也得到了广泛的研究,被称为第六现[90]。以上结果表明,乙烯信号转录因子EIN3/EIL1大植物激素。与其他五大类植物激素相比,油菜素内脂可能是乙烯和茉莉酸信号通路的交叉结点。具有独特的生理活性,而且含量极低即可发挥生理效5.7乙烯与水杨酸应。近期的研究发现,油菜素内脂与乙烯信号在下胚轴中国煤化工伸长以及顶端弯钩形成等方面存在着相互作用及功能植物MH素,即水杨酸、茉莉冗余[80]。乙烯能够通过控制油菜素内脂的生物合成并酸和乙烯.CNMHG烯相互协同,茉莉自然杂志第34卷第4期科技进展酸/乙烯依赖的防御反应会受到寄生性病原菌以及植食萄糖超敏感的表型[00-101]。sis1和gin4两个葡萄糖不性昆虫的侵害而被诱导激活;水杨酸则往往与茉莉酸/敏感突变体的发现进- -步确定了糖信号和乙烯信号的乙烯相互拮抗,水杨酸依赖的防御反应主要受到活体营拮抗关系,因为这两个突变都是ctr1的等位突变形养的病原菌侵染而激活591-93]。另一方面,乙烯和水杨式101.102]。 虽然sis1 和gin4在萌发后的发育过程中表酸之间也存在协同关系。之前的研究发现,在乙烯不敏现出相似的葡萄糖不敏感表型,但是只有gin4/ctr1 在感的烟草中乙烯对于由烟草花叶病毒感染诱发的水杨暗中表现出组成型的三重反应表型。如前所述,过表达酸依赖的系统获得性抗性(systemic acquired resistance,EIN2的C末端虽然可以部分恢复拟南芥光下生长的幼SAR)发病是必需的[94]。乙烯可以增强拟南芥对水杨苗和成株的乙烯反应表型,但是在暗中却仍没有三重反酸的反应,导致水杨酸应答标志基因PR-1 表达增应表型,说明葡萄糖信号可能影响ETR1和EIN2下游强[95-96]。由此可见,乙烯与水杨酸不仅相互拮抗,乙烯的特定乙烯信号途径[,100-101]。进一步的研究发现,葡还能对水杨酸诱导的PR-1基因表达产生协同效应,而萄糖可能通过植物葡萄糖感受蛋白己糖激酶来促进乙.且这一协同效应在乙烯不敏感突变体ein2中被阻断烯信号转录因子EIN3蛋白的降解,这与乙烯促进EIN3了,说明乙烯对水杨酸的调节依赖于EIN2且需经由乙蛋白的稳定性恰好相反;另外,ein3突变体表现出葡萄烯信号途径[96]。糖超敏感表型,而在拟南芥中转基因过表达EIN3蛋白则会降低植物对葡萄糖的敏感性[103]。这一结果说明5.8乙烯与光EIN3可能是葡萄糖和乙烯信号在ETR1和EIN2下游植物的生长、发育离不开光,人们对于光信号在植相互拮抗的一个节点。物体内的传导机制研究由来已久。如前所述,乙烯处理(2012年2月17日收到)能够导致依赖于HLS1的ARF2蛋白水平的降低,进而[1 ] JOHNSONP R, ECKERJ R. The ethylene gas signal trans-造成顶端弯钩两侧细胞生长速率产生差异从而加剧弯duction pathway: a molecular perspective [J]. Annu Rev钩65.9798]。研究发现,光和乙烯对顶端弯钩的作用恰[2] BLEECKERA B, KENDE H. Ethylene: a gaseous signal mol-好相反,光照能够引起HLS1蛋白水平降低,进而导致ecule in plants [J]. Annu Rev Cell Dev Biol, 2000, 16:1-18.ARF2蛋白积累使弯钩消除66]。由此看出,光、乙烯和[3] KENDRICK M D, CHANG C. Ethylene signaling: new levelsof complexity and regulation [J]. Curr Opin Plant Biol, 2008,生长素在控制植物顶端弯钩形成方面是协同作用的。11: 479-485.最近的研究发现,乙烯能够促进植物由暗形态建成到光[ 4] STEPANOVA A N, ECKER J R. Ethylene signaling: from mu-tants to molecules [J]. Curr Opin Plant Biol, 2000, 3:353-360.形态建成的转换[9]。在植物幼苗中,原叶绿酸(proto-.[5] CHANG C, KWOK SF, BLEECKER A B, MEYEROWITZchlorophyllide, Pchlide) 需经过光依赖的氧化还原酶E M. Arabidopsis cthylenc-response gene ETR1: similarity ofPOR( protochlorophyllide oxidoreductase) 催化形成叶product to two-component regulators [J]. Science, 1993,262: 539-544.绿酸(chlorophyllide, Chlide), 以促进叶绿体的形成而[6] HUA J, SAKAI H, NOURIZADEH s, et al. EIN4 and ERS2实现光形态建成。黑暗导致的原叶绿酸的过度积累对are members of the putative ethylene receptor gene family inArabidopsis [J]. Plant Cell, 1998,10: 1321-1332.植物具有光毒性。研究发现,在黑暗中乙烯信号可以通.[ 7 ] KIEBER JJ,ROTHENBERG M, ROMANG, etal. CTR1,过其转录因子EIN3/EIL1抑制叶绿素前体Pchlide 的a negative regulator of the ethylene response pathway in Ara-过度积累;另外,EIN3/EIL1可以直接诱导PORA/B基bidopsis, encodes a member of the raf family of protein kina-ses[J]. Cell, 1993,72: 427-441.因的转录从而促进叶绿素合成,从而促进了植物由暗形[8] GAO z, CHEN Y F, RANDLETT M D, et al. Localization态建成到光形态建成的转换[99]。of the Raf like kinase CTR1 to the endoplasmic reticulum ofArabidopsis through participation in ethylene receptor signa-ling complexes [J]. J Biol Chem, 2003, 278: 34725-34732.5.9乙烯与葡萄糖[9] ALONSOJ M, HIRAYAMA T, ROMANG, etal. EIN2,a .bifunctional transducer of ethylene and stress responses in Ar.葡萄糖不仅作为能量供应物质存在,它也是植物生abidopsis[J]. Science, 1999, 284: 2148-2152.长发育过程中的重要信号分子。科学家在研究葡萄糖[10] CHAO Q, ROTHENBERG M, SOLANO R, et al. Activation不敏感突变体gin1 时发现了葡萄糖和乙烯信号之间相of the ethylene gas response pathway in Arabidopsis by thenuclcar protein ETHYLENEINSENSITIVE3and related pro-互拮抗的关系[100]。乙烯过表达突变体eto1和乙烯组tcins[J]. Cell, 1997, 89: 1133-1144.成型信号突变体ctr1表现出葡萄糖不敏感的表型强烈∩Q, et al. Nuclear eventsin eth中国煤_ascade mediated by ETH-支持了这一-拮抗关系。与此相一致的是,几个乙烯不敏YLENGLENE- RESPONSE-FAC.感突变体etr1-1, ein2, ein3 以及ein6 则表现出对葡TORIYH1 CNM H GUuNEProgressChinese Journal of Nature Vol.34 No. 4[12] BINDER B M,RODRfGUEZ F I, BLEECKER A B. TheBiol Chem, 2004, 279: 48734-48741.Copper Transporter RAN1 Is Essential for Biogenesis of Eth-[29] RODRIGUEZFI, ESCHJJ, HALLAE, etal. A copperylene Receptors in Arabidopsis [J]. J Biol Chem, 2010, 285:cofactor for the ethylene receptor ETR! from Arabidopsis37263-37270.[J]. Science, 1999, 283(5404) : 996-998.[13] RESNICKJS, WENC K, SHOCKEYJ A, et al. REVER.[30] ALONSOJ M, STEPANOVA A N, SOLANOR, et al. FiveSION-TO-ETHYLENE SENSITIVITY1, a conserved genecomponents of the ethylenc-response pathway identified in athat regulates ethylene receptor function in Arabidopsis [J].screen for weak ethylene insensitive mutants in ArabidopsisProc Natl Acad Sci USA, 2006, 103: 7917.7922.[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2003a, 100: 2992-2997.[14] DONG C H, RIVAROLA M, RESNICK JS, et al. Subcellu. .[31] HUAJ, MEYEROWITZ E M. Ethylene responses are nega-lar co-localization of Arabidopsis RTE1 and ETR1 supports atively regulated by a receptor gene family in Arabidopsis thali-regulatory role for RTE1 in ETR1 ethylene signaling [J].ana [J]. Cell, 1998, 94: 261-271.Plant J, 2008, 53: 275-286.[32] HALL A E. BLEECKER A B. Analysis of combinatorial loss[15] GAGNE J M, SMALLE J, GINGERICH D], et al. Arabi-of-function mutants in the Arabidopsis ethylene receptors re-dopsis EIN3-binding F-box 1 and 2 form ubiquitin-protein liga-veals that the ers1etr1 double mutant has severe developmentalses that repress ethylene action and promote growth by direc-defects that are EIN2 dependent [J]. Plant Cell, 2003, 15: .ting EIN3 degradation [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2004 ,2032- 2041.101: 6803-6808.[33] BINDER B M. O'MALLEY RC, WANG w y,etal. Ara-[16] GUO H, ECKERJ R. Plant responses to ethylene gas are me.bidopsis seedling growth response and recovery to ethylene. Adiated by SCF ( EBF1/EBF2 )-dependent proteolysis of EIN3kinetic analysis [J]. Plant Physiol, 2004a, 136; 2913-2920.transcription factor [J]. Cell, 2003, 115; 667-677.[34] XIEF, LIUQ, WEN C K. Receptor signal output mediated[17] POTUSCHAK T, LECHNER E, PARMENTIER Y,et al.by the ETR1 N-terminus is primarily subfamily I receptors-EIN3-dependent regulation of plant ethylene hormone signa-dependent [J. Plant Physiol, 2006,142:492-508.ling by two Arabidopsis F tbox protcins: EBF1 and EBF2 [J].[35] BARRY C s, GIOVANNONI J J. Ripening in the tomatoCell, 2003, 115: 679-689.green-ripe mutant is inhibited by ectopic expression of a pro-[18] QIAO H, CHANG K N, YAZAKIJ, et al. Interplay betweentein that disrupts ethylene signaling []. Proc Natl Acad Scicthylene, ETP1/ETP2 F-box protins, and degradation ofUSA, 2006. 103: 7923-7928.EIN2 triggers cthylene responses in Arabidopsis [J]. Genes &[36] CLARK K L, LARSENP B, WANG X, et al. Association ofDev, 2009, 23:512-521.the Arabidopsis CTR1 Raf-like kinase with the ETR1 and[19] OLMEDO G, GUO H, GREGORY B D, et al. ETHYLENE-ERS ethylene receptors [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1998,INSENSITIVE5 encodes a 5'- +3' exoribonuclease required for95: 5401-5406.regulation of the EIN3-targeting F-box proteins EBF1/2 [J].[37] HUANG Y, LI H, HUTCHISON c E. et al. BiochemicalProc Natl Acad Sci USA, 2006, 103: 13286-13293.and functionalanalysis of CTR1, a protein kinase that nega-[20] POTUSCHAK T, VANSIRI A, BINDER BM,ctal. The ex.tively regulates ethylene signaling in Arabidopsis [J]. PlantJ,oribonuclease XRN4 is a component of the ecthylene response2003, 33: 21-233.pathway in Arabidopsis [J]. Plant Cell, 2006,18:3047-3057.[38] NOVIKOVA G v, MOSHKOV 1E, SMITHAR, etal. The[21] YOOSD, CHO Y H, TENA G, et al. Dual control of nucie-effect of ethylene on MAPKinase-like activity in Arabidopsisar EIN3 by bifurcate MAPK cascades in Cr H4 signaling [J].thaliana [J]. FEBS Lett, 2000, 474: 29-32.Nature, 2008, 451: 789-795.39] OUAKED F,ROZHON w, LECOURIEUx D, et al. A[22]AnF Y, ZhaoQ, Ji Y s, et al. Ethylene- induced stabilizationMAPK pathway mediates ethylene signaling in plants [J].of ETHYLENE INSENSITIVE3 and EIN3-LJKE1 is mediatedEMBOJ, 2003, 22: 1282-1288.by proteasomal degradation of EIN3 binding F-Box 1 and 2[40] ECKER J R. Reentry of the ethylene MPK6 module [J].that requires EIN2 in Arabidopsis [J]. Plant Cell, 2010, 22:Plant Cell, 2004, 16: 3169-3173.2384-2401 .[41] LIU Y, ZHANG s. Phosphorylation of 1-aminocyclopropane.[23] SAKAI H, HUAJ, CHEN Q G, et al. ETR2 is an ETR1-ike1-carbo:)xylic acid synthase by MPK6, a stress-responsive mito-gene involved in ethylene signaling in Arabidopsis [J]. Procgen-activated protein kinase, induces ethylene biosynthesis inNatl Acad Sci USA, 1998, 95; 5812-5817.Arabidopsis [J]. Plant Cell, 2004, 16: 3386-3399.[24] CHANG C, STADLER R. Ethylene hormone receptor action[42] J00 s, LIU Y, LUETH A, et al. MAPK phosphorylation-in.in Arabidopsis [J]. Bioessays, 2001. 23: 619-627.duced stabiliation of ACS6 protein is mediated by the non-[25] SCHALLER G E, BLEECKER A B. Ethyiene binding sitescatalytic C-terminal domain, which also contains the cis-deter-generated in yeast expressing the Arabidopsis ETR1 gene [J].minant for rapid degradation by the 26S proteasome pathwayScience, 1995,270: 1809-1811.[J]. PlantJ, 2008, 54: 129-140.[26] WANG W Y, HALL AE, O'MALLEY R, et al. Canonical[43] XUJ, LI Y, WANG Y, ct al. Activation of MAPK kinase 9histidine kinase activity of the transmitter domain of theinduccs ethylene and camalexin biosynthesis and enhances sen-ETR1 ethylene receptor from Arabidopsis is not required forsitivity to salt stress in Arabidopsis [J]. J Biol Chem, 2008,signal transmission [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2003, 100:283: 26996-27006.[44] BETHKE G, UNTHAN T, UHRIGJF, et al. Flg22 regu-[27] GAMBLE R L. QU X, SCHALLER G E. Mutational analysislates the release of an ethylene response factor substrate fromof the ethylene receptor ETR1. Role of the histidine kinaseMAP kinase 6 in Arabidopsis thaliana via ethylene signalingdomain in dominant ethylene insensitivity [J]. Plant Physiol,[J]. Proc Natl AcadLSei USA.2009. 106: 8067-8072.2002,128: 1428-1438.[45] GUZM中国煤化工triple responseof Ar-[28] MOUSSATCHE P, KLEE H J. Altophosphorylation activityabidopsCNMH Glians[J]. Plan Cll.of the Arabidopsis ethylene receptor multigene family [J]. J1990 ,YH●226●自然杂志第34卷第4期科技进展.[46] BISSON M M,BLECKMANN A, ALlEKOTTE s, et al.[64] ABEL s, NGUYEN M D, CHOW w, et al. ASC4, a primaryEIN2, the central regulator of ethylene sigalling. is localizedindoleacetic acid-responsive gene encoding 1-aminocyelopro-at the ER membrane where it interacts with the ethylene re-pane- 1-carboxylate synthase in Arabidopsis thaliana : structur-ceptor ETR1 [J]. BiochemJ, 2009, 424(1): 1-6.al charactcrization, expression in Escherichia coli, and ex-[47] CHRISTIANS MJ, ROBLES L M, ZELLERSM, etal. Thepression characteristics in response to auxin [J]. J Biol Chem,eer5 mutation, which affects a novel proteasome-related sub-1995,270: 19093-19099.unit, indicates a prominent role for the COP9 signalosome in[65] LEHMAN A, BLACK R, ECKERJ R. HOOKLESS1. an ethyl-resetting the ethylene-signaling pathway in Arabidopsis [J]. .cne response gene, is required for differential cell elongation in thePlant J, 2008,55; 467-477.Arabidopsis hypocotyl [J]. Cell, 1996, 85; 183-194.[48] BISSON M M, GROTH G. New insight in ethylene signaling:[66] LI H, JOHNSON P, STEPANOVA A, et al. Convergence ofautokinase activity of ETR1 modulates the interaction of re-signaling pathways in the control of differential cell growth inceptors and EIN2 [J]. Mol Plant, 2010, 3: 882-889 .Arabidopsis [J]. Dev Cell, 2004, 7: 193-204.[49] FUJITA H, SYONO K. Genetic analysis of the effects of po-[67] WOESTE K E, YE c, KIEBER JJ. Two Arabidopsis mutantslar auxin transport inhibitors on root growth in Arabidopsisthat overproduce ethylene are affected in the posttranscrip-thaliana [J]. Plant Cell Physiol, 1996, 37; 1094-1101.tional regulation of 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid[50]SU w P, HOWELLS H. A single genetic locus, Ckrl, de-synthase [J]. Plant Physiol, 1999, 119: 521-530.fines Arabidopsis mutants in which root growth is resistant to68] ARTECA R N, ARTECA了M. Effects of brassinosteroid,low concentrations of cytokinin [J]. Plant Physiol, 1992, 99:auxin, and cytokinin on ethylene production in Arabidopsis1569-1574.thaliana plants [J]. J Exp Bot, 2008. 59; 3019-3026.[51] BINDER B M,MORTIMORE L A. STEPANOVA A N, et[69] VOGELJ P, WOESTE K E, THEOLOGIS A, et al. Reces-al. Short-term growth responses to ethylene in Arabidopsissive and dominant mutations in the ethylene biosynthetic geneseedlings are EIN3/EIL1 independent [J]. Plant Physiol,ACS5 of Arabidopsis confer cytokinin insensitivity and ethyl-2004,136; 2921-2927.ene overproduction, respectively []]. Proc Natl Acad Sci[52] OHME-TAKAGI M, SHINSHI H. Ethylene-inducible DNAUSA, 1998, 95: 4766-4771.binding proteins that interact with an ethylene responsive elc-[70] CHAE H s, FAURE F, KIEBERJ J. The elo1, elo2, andment [J]. Plant Cell, 1995, 7: 173-182.e1o3 mutations and cytokinin treatment increase ethylene bio-[53] ALONSOJ M, STEPANOVA A N, LEISSE T J, et al. Ge-synthesis in Arabidopsis by increasing the stability of ACSnome-wide insertional mutagenesis of Arabidopsis thalianaprotein []. Plant Cell, 2003, 15: 545-559.[J]. Science, 2003b, 301: 653-657.[71] HANSEN M,CHAE H s. KIEBER J J. The regulation of[54] STEPANOVA A N, ALONSOJ M. Ethylene signaling and re-ACS protein stability by cytokinin and brassinosteroid [J].sponsc: where different regulatory modules meet [J]. CurrPlant J, 2009, 57: 606-614.Opin Plant Biol, 2009,12: 548-555[72] CALVOA P, NICOLAS C, NICOLAS G, et al. Evidence of[55] STEPANOVA A N, ALONSOJ M. Ethylene signaling and re-a cross-talk regulation of a GA 20-oxidase ( FsGA20ox1) bysponse pathway: A unique signaling cascade with a multitude of in-gibberellins and ethylene during the breaking of dormancy inputs and outputs [J]. Plant Physiol, 2005, 123: 195-206.Fagus sylvaica seeds [J]. Physiol Plantarum, 2004. 120: 623-[56] ROMAN G, LUBARSKY B, KIEBER J J, et al. Genetic630.analysis of ethylene signal transduction in Arabidopsis thali-[73] HIRANO K,UEGUCHI-TANAKA M,MATSUOKA M.ana: five novel mutant loci integrated into a stress responseGID1-mediated gibbrellin signaling in plants [J]. Trendspathway [J]. Genetics, 1995, 139: 1393-1409.Plant Sci, 2008, 13; 192-199.[57] BENNETT M J, MARCHANT A. GREENHG, etal. Ara-[74] ACHARD P, VRIEZEN w H, VAN DER STRAETEN D, etbidopsis AUX1 gene: a permease-like regulator of root grav.al. Ethylene regulates Arabidopsis development via the modu-itropism [J]. Science, 1996, 273: 948-950.lation of DELLA protein growth repressor function [J]. Plant[58] BARTEL B. Auxin biosenthesis [J]. Annu Rev Plant PhysiolCell, 2003, 15: 2816-2825.Plant Mol Biol, 1997, 48: 51-66.[75] ACHARD P, BAGHOUR M, CHAPPLE A. et al. The plant[59] STEPANOVA A N, HOYTJ M, HAMILTONAA,etal. Astress hormone ethylene controls floral transition via DELLA-link between ethylene and auxin uncovered by the character.dependent regulation of floral meristem-identity genes [J].ization of two root specific ethylene-insensitive mutants in Ar-Proc Natl Acad Sci USA, 2007, 104 : 6484-6489.abidopsis [J]. Plant Cll, 2005, 17: 2230-2242.[76] AN F, ZHANG X, ZHU z, et al. Coordinated regulation of[60] STEPANOVA A N, ROBERTSON-HOYT J, YUN J, et al.apical hook development by gibbrellins and ethylene in etio-TAA 1-mediated auxin biosynthesis is essential for hormonelated Arabidopsis seedlings [J]. Cell Res, 2012, 22: 915-927.crosstalk and plant development [J]. Cell, 2008, 133: 177-191.[77] GHASSEMIAN M, NAMBARA E, cutlers, et al. Regu-[61] RUZICKA K, LJUNG K, VANNESTE S, et al. Ethylene .lation of abscisic acid signaling by the ethylene response path-regulates root growth through effects on auxin biosynthesisway in Arabidopsis [J]. Plant Cell, 2000, 12: 117-1126.and transport-dependent auxin distribution [J]. Plant Cell,[78] BEAUDOIN N, SERIZET c, GOSTI F, et al. Interactions2007, 19: 2197-2212.between abscisic acid and ethylene signaling cascades [J}.[62] STEPANOVA A N, YUN J, LIKHACHEVA A V, et al.Plant Cell, 2000, 12: 1103-1115.Multilevel interactions between ethylene and auxin in Arabi-[79] TANAKA Y, SANO T, TAMAOKI M, et al. Ethylene inhib-dopsis roots [J]. Plant Cell, 2007, 19: 2169-2185 .its abscisic acid- induced stomatal closure in Arabidopsis [J].[63] SWARUP R, PERRY P, HAGENBEEK D, et al. EthylenePlantupregulates auxin biosynthesis in Arabidopsis seedlings to en-[80] DE中国煤化工EtIEtzo, etal.hance inhibition of root cell elongation [J]. Plant Cell, 2007,AuxirYHCN M H G; tipartite control of19; 2186-2196.growi2J]. Plant Cell Physiol,●227●ProgressChinese Journal of Nature Vol. 34 No. 42005, 46(6): 827-836.[100] ZHOU L. JANG JC, JONES T L. et al. Glucose and ethyl-[81] GENDRONJ M, HAQUEB A, GENDRONBN, et al. Chem.ene signal transduction crosstalk revealed by an Arabidopsisical genetic disection of brassinostcroid-ethylene interactionglucose-insensitive mutant [J]. Proc Natl Acad Sci USA.[J]. Mol Plant, 2008, 1(2) : 368-379.1998, 95: 10294.10299.[82] DESLAURIERS S D, LARSEN P B. FERONIA is a key mod-[101] CHENG w H, ENDO A, ZHOU L, et al. A unique short-ulator of brassinosteroid and ethylene responsiveness in Arabi-chain dehydrogenase/ reductase in Arabidopsis glucose signa-dopsis hypocotyls [J]. Mol Plant, 2010, 3(3) : 626-640.ling and abscisic acid biosynthesis and functions [J]. Plant[83] MEMELINK J. Regulation of gene expression by jasmonateCell, 2002. 14: 2723-2743.hormoncs [J]. Phytochemistry, 2009, 70; 1560-1570.[102] GIBSON s I, LABY R J, KIM D. The sugar. insensitive1[84] TURNERJ G, ELLIS C E, DEVOTO A. The jasmonate sig-(sis1) mutant of Arabidopsis is alelie to cIr1 [J]. Biochemnal pathway [J]. Plant Cell, 2002, 14: s153-S164.Bioph Res Co, 2001, 280; 196-203.[85] BERROCAL-LOBO M,MOLINA A. Ethylene response fac-[103] YANAGISAWA s, Y00 s D, SHEEN J. Differential regu.tor 1 mediates Arabidopsis resistance to the soilborne funguslation of EIN3 stability by glucose and ethylene signalling inFusarium oxysporum [J]. Mol Plant Microbe Interact, 2004,plants [J]. Nature, 2003, 425: 521-525.17: 763-770.[86] DONG X N. SA, JA, ethylene, and disease resistance inplants [J]. Curr Opin Plant Biol, 1998, 1(4): 316-323.Study of Ethylene Signal Transduction Pathway[87] BROWN R L, KAZAN K, MCGRATH K C, et al. A roleZHANG Cun-li$,GUO Hong-wei@for the GCC-box in jasmonate mediated activation of thePDF1.2 gene of Arabidopsis [J]. Plant Physiol, 2003, 132:①Ph. D. Candidate,②Professor,State Key Laboratory of Protein1020-1032.and Plant Gene Research,School of Life Sciences,Peking Universi-[88] LORENZO o, PIQUERAS R, SANCHEZ-SERRANOJ J,ly, Beijing 100871. ChinaSOLANO R. ETHYLENE RESPONSE FACTOR1 integratesAbstract As one of the five classical phytohormones, ethylene hassignals from ethylene and jasmonate pathways in plant defense[J]. Plant Cell, 2003,15: 165-178.very simple structure, the gascous phytohormone ethylene has im-[89] PENNINCKXI, EGGERMONT K,TERRAS F, et al.portant effects on the developmental processes and stress responsesPathogen-induced systemic activation of a plant defensin geneof plant. Through nearly two decades of research, scientists estab-in Arabidopsis follows a salicylic acid- independent pathwaylished a largely linear ethylene signal transduction pathway. In the[J]. Plant Cell, 1996, 8: 2309-2323.[90] ZHUz, AN F, FENG Y, et al. Derepression of ethylene-model plant Arabidopsis, there are five ethylene receptors ETR1,stabilized transcription factors ( EIN3/ELL1) mediates jas-ETR2, ERS1, ERS2 and EIN4 encoded by a multigene family inmonate and ethylene signaling synergy in Arabidopsis [J ].the upstream of this signaling pathway. A Raf-like protein kinaseProc Natl Acad Sci USA, 2011, 108(30): 12539-12544.CTR1 combines with ethylene receptors and co-localizes in the ER[91] KESSLER A, BALDWIN I T. Plant responses to insect her-membrane together with these receptors. In the absence of ethyl-bivory: the emerging molecular analysis [J]. Annu Rev Plantene, receptors and CTR1 can inhibit the downstream ethylene sig-Biol, 2002, 53: 299-328.naling together. A positive regulator EIN2 is the downstream of[92] GLAZEBROOK J. Contrasting mechanisms of defense againstthese two negative regulators. If EIN2 gene is mutated, the etiola-biotrophic and necrotrophic pathogens [J]. Annu Rev Phyto-ted seedlings of plant will show completely ethylenc insensitive phe-pathol, 2005, 43; 205-227.notype even when high concentration of ethylene exists, which[93] HOWE G A, JANDER G. Plant immunity to insect herbi-demonstrates that EIN2 plays a key role in ethylene signaling path.vores [J]. Annu Rev Plant Biol, 2008, 59: 41-66.[94] VERBERNE M C, HOEKSTRAJ, BOLJ F, et al. Signalingway. EIN3 and EILs are transcription factors downstream of EIN2.of systemic acquired resistance in tobacco depends on ethyleneThey will start the transcription of ethylene related genes in re-sponse to ethylene signal. It was also found that these transcriptionperception [J]. Plant J, 2003, 35: 27-32.[95] LAWTON K A, POTTER s L, UKNES s, et al. Acquired re-factors were regulated by ubiquitin/ proteasome degradation path-sistance signal transduction in Arabidopsis is ethylene inde-way. The F-box proteins, which are responsible for recognition andpendent [J]. Plant Cell, 1994, 6; 581-588.[96] DE vos M,VAN ZAANEN w, KOORNNEEF A, et ai.3’exonuclease and antagonizes the negative feedback regulation onHerbivore-induced resistance against microbial pathogens inEIN3 by promoting EBFI and EBF2 mRNA decay. Recently, stud-Arabidopsis [J]. Plant Physiol, 2006, 142: 352-363.ies have shown that EIN2 is also a short hal-life protein and will be[97] sILK W H, ERICKSON R o. Kinematics of hypocotyl curva-degraded by the ubiquitin/ proteasome pathway. Another two F-boxture[J]. Am J Bot,1978, 65: 310-319.proteins ETP1 and ETP2 are responsible for the regulation of EIN2[98] HARPHAMN VJ, BERRY A w, KNEEEM, et al. Theprotein. Although grcat progress was made in ethylene signal trans-effect of ethylene on the growth and development of wide-athway, further research on the fine-tuning of ethylenetype and mutant Arabidopsis thaliana (L.) Heynh [J]. Annsignal transduction and the crosstalk between ethylene and otherBot (Lond), 1991,68: 55-61.[99] ZHONG s, ZHAO M, SHI T, et al. EIN3/EIL1 cooperatephytohormones still need to be detected.with PIF1 to prevent photo-oxidation and to promote greeningKey words phytohormone, ethylene ,signal transductionof Arabidopsis seedlings [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2009,106: 21431-21436.中国煤化工(编辑: 沈美芳)YHCNMHG

论文截图
版权:如无特殊注明,文章转载自网络,侵权请联系cnmhg168#163.com删除!文件均为网友上传,仅供研究和学习使用,务必24小时内删除。